Die Laborerfahrung:Zur Frage der Aufbewahrung von Dermatophyten und Trichomonas vaginalis

Zusammenfassung Für die Labordauerkultur von Dermatophyten wird ein Keratin‐Agar beschrieben, auf dem die Laborstämme ihre Korrespondenz zu Naturstämmen weniger schnell verlieren. Die Keratin‐Passage führt zu einer Aktivierung der morphologischen Mannigfaltigkeit der Dermatophyten. Der Flagellat Trichomonas vaginalis muß alle 48–72 Stunden in frisches Nährmedium überimpft werden, um ihn am Leben zu halten. Fügt man aber dem Pferdeserum‐Thio‐glycollate‐Medium 2 % Aminoessigsäure hinzu, kann im selben Medium ohne überimpfen der Flagellat 4–8 Wochen lebend gehalten werden. Versagerquote bei 10 %. Eine weitere Kulturmöglichkeit besteht darin, das Pferdeserum durch 12 % Hühnerei‐Eiweiß zu ersetzen. Hierin konnte Trichomonas vaginalis 2–4 Wochen ohne überimpfen lebend gehalten werden. Versagerquote bis zu 25 %. Summary A keratin‐agar for maintenance of dermatophytes is described. Using this medium the laboratory strains do not loose their correspondence to natural strains so quickly. The keratin‐passage causes activation of morphological manifoldness of the dermatphytes. The preparation of a culture medium for Trichomonas vaginalis by addition of 2 % aminoacetic acid to horseserum‐thioglycollate‐medium is described. After inoculation at the bottom of the culture the flagellate can be kept alive for 4–8 weeks at 37° C without subinoculation. The failure rate is about 10 %. The replacement of the horseserum in the medium by 12 % fresh hen's egg albumen gives a further possible culture method for the protozoon. The flagellate could be kept alive for 2–4 weeks in this medium. The failure rate may be up to 25 %. Resumen Para el mantenimiento de los cultivos de dermatofitos en el laboratorio se describe un agar‐creatina sobre el cual estos pierden menos rápidamente su correspondencia con las cepas naturales. El pasaje por creatina lleva a una activación de las múltiples características de los dermatofitos. Para mantener viva a la Tricomona vaginal se la debe reinocular en un medio de cultivo fresco cada 48–72 horas. Si se agrega 2 % de ácido aminoacético a este medio de cultivo de suero de equino y tioglicolate, se la puede mantener viva 4–8 semanas sin reinoculación. Porcentaje de fracasos alrededor del 10 %. Otra posibilidad está dada por el reemplazo del suero de equino por 12% de albúmina de huevo de ave. Así se pudo mantener viva a la Tricomona vaginal 2–4 semanas sin reinoculación. Porcentaje de fracaso alrededor del 25 %.