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O objetivo deste estudo foi marcar uma proteína utilizada como modelo, a soro albumina bovina (SAB), com 99mTecnécio (99mTc), encapsular a rroteína marcada (99mTc-SAB) em lipossomas e empregar este marcador para quantificar a 99m c-SAB capturada pelas placas de Peyer de camundongos Balb/c após administração oral. A 99mTc-SAB (taxa de marcação=94,9±2,4%; n=25) foi encapsulada em lipossomas multilamelar (MLV), unilamelar de pequeno tamanho (SUV) ou unilamelar de grande tamanho (LUV) compostos de fosfatidilcolina de soja (PC); PC e colesterol (CH) (razão molar 8/2); PC, CH e fosfatidilglicerol (PG) (razão molar 7/2/1) ou distearoilfosfatidilcolina (DSPC), CH e PG (razão molar 7/2/1). Utilizando eletroforese em gel de agarose e imunoeletroforese contra uma imunoglobulina anti-SAB específica, foi verificado que a SAB não sofreu degradação após ter sido marcada com 99mTc e encapsulada em lipossomas. 99mTc-SAB encapsulada em SUV compostos por PC/CH/PG ou DSPC/CH/ PG foi preferencialmente capturada pelas placas de Peyer. A captura de 99mTc-SAB encapsulada em LUV foi reduzida quando comparada com aquela observada para SUV com a mesma composição em lipídios. 99mTc-SAB encapsulada em MLV compostos por PC/CH/PG ou DSPC/CH/PG e em SUV compostos de PC ou PC/CH não foi capturada pelas placas de Peyer. Os resultados indicam que SUV pode ser um carreador para antígenos instáveis no trato gastrintestinal, tornando-os potencialmente capazes de induzir a resposta imunológica das mucosas. The aim of this study was to employ a model protein, the bovine serum albumin (SAB), radiolabelled with 99mTechnetium (99mTc) (99mTc-SAB) and encapsulated into liposomes, in order to determine the amount de 99mTc-SAB taken up by Peyer´s patches following per os administration in mice Balb/c. The 99mTc-SAB, labelling yield of 94.9±2.4 % (n=25), was encapsulated within multilamellar large vesicles (MLV), small unilamellar vesicles (SUV) or large unilamellar vesicles (LUV) composed of soybean phosphatidylcholine (PC); PC and cholesterol (CH) (molar ratio 8/2); PC, CH and phosphatidylglicerol (PG) (molar ratio 7/2/1) or distearoylphosphatidylcholine (DSPC), CH and PG (molar ratio 7/2/1). A gel electrophoresis and a gel immunoelectrophoresis, using a specific anti-SAB serum immunoglobulin, were employed to evaluate the integrity of SAB after labelling with 99mTc and after encapsulation into liposomes. Labelling with 99mTc and liposome encapsulation did not result in degradation of SAB. SUVencapsulated-99mTc-SAB was preferentially taken up by Peyer´s patches. Uptake of LUV-encapsulated-99mTc-SAB by Peyer´s patches was reduced when compared with that observed for the SUV-encapsulated-99mTc-SAB. 99mTc-SAB encapsulated into SUV composed of PC or PC/CH was not uptaked by Peyer´s patches. The lipid composition (PC or DSPC/CH/PG) of SUV did not modify 99mTc-SAB uptake by Peyer´s patches. In conclusion, SUV might be an effective carrier for unstable antigens administered per os to induce mucosal immune response

Captura de lipossomas pelas placas de Peyer de camundongos após administração oral